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FlashPure Universal Genomic DNA Kit
血液/細胞/組織/鼠尾/細菌基因組 DNA ti取試劑盒（離心柱型）
細胞基因組DNA快速ti取試劑盒 核酸提取
目錄號:40110
產品成份 | 40110-50 （50 次） | 40110-100 （100 次） |
平衡液 | 5 ml | 10ml |
裂解液 TL | 11 ml | 20ml |
結合液 CB | 11 ml | 20ml |
抑制物去除液IR | 25 ml | 50ml |
漂洗液WB | 13 ml | 25ml |
洗脫緩沖液 EB | 10 ml | 15ml |
蛋白mei K 溶液 | 1 ml | 2x 1ml |
DNA 吸附柱和收集管 | 50 套 | 100套 |
1x PBS（贈送） | 10 ml | 20ml |
自備試劑：
無水乙chun，RNase A（可選），溶菌mei（用于革蘭氏陽性菌，可選）
室溫（15~25℃）
蛋白mei K，室溫可保存 6 個月，4℃保存 12 個月，~ 20℃保存 2 年。
適用于從xue液、培養細胞、動物組織、植物組織、鼠尾、細菌等樣本中快速提取高質量的基因組DNA。
本試劑盒采用du特的裂解液，利用硅膠膜特異吸附DNA，無需fenlv仿等有毒試劑，也無需進行耗時的chun類沉淀，最大限度的去除蛋白及其他抑制性雜質，得到基因組DNA，無蛋白、核酸mei污染，可直接進行PCR、mei切和雜交等相關分子生物學實驗。
1. 簡便快速：30 min 內可獲得高純度的基因組 DNA。
2. 安全無毒：無需苯fen/lv仿抽提。
3. 高產：典型的產量 200µl 全血可提取出 3～6µg 基因組 DNA，
4. 高純：OD260/280=1.7～1.9，長度可達 30～50 kb，可直接進行 PCR、mei切和雜交等分子生物學實驗。
1. 如果裂解液TL、結合液CB、抑制物去除液IR有沉淀析出，可在37℃水浴溶解，搖勻后使用。
2. 開始實驗前將需要的水浴先預熱到70℃備用。
3. 為了最jia效果，最hao使用新鮮血液標本或者4℃存放少于3天的標本，不要使用反復凍融超過3次的標本，否則會嚴重降低產量，不同樣品尤其疾病樣品中白細胞數量差異可能非常大，因此產量的個體差異也可能非常大。
第一次使用前，請先在漂洗液 WB 中加入zhi定量無水乙chun，詳見瓶身的標簽。提示：所有離心步驟必須在室溫（15~25℃）下進行。
1. 柱平衡：向吸附柱的膜中央（吸附柱放入收集管中）加入 100μl 平衡液，
12,000 rpm 離心 1 min，棄濾液，將吸附柱重新放回收集管中。
（請使用當天處理過的柱子）
a. 血液
取 200 μl 新鮮、冷凍或加入各種抗凝劑的血液，放入 1.5 ml 離心管。
如果全血起始量小于200 μl，則用1× PBS補足到200 μl。
如果起始量介于300 μl~1 ml之間，則需要先進行紅細胞裂解操作: 在樣品中加入3倍體積紅細胞裂解液顛倒混勻，室溫放置10 min，期間再顛倒混勻幾次。13,000 rpm離心20 sec(對于1.5 ml離心管)或2,000 ~ 3,000 rpm離心5 min(對于15 ml離心管)，吸去上清，留下白細胞沉淀（如果看到的是大部分的紅色細胞團，則再次重復上述紅細胞裂解步驟），加入 200 μl 1× PBS，振蕩至che底懸浮。
如果處理血樣為禽類、鳥類、兩棲類或更低級生物的抗凝血液，其紅細胞為有核細胞，因此處理量僅用5 ~ 20 μl，可加1× PBS 補足到200 μl后，進行下面的裂解步驟。
① 105 ~ 106 懸浮細胞到一個 1.5 ml 離心管；對于貼壁細胞，應該先用胰蛋白mei消化后吹打下來收集。
② 13, 000 rpm 離心 10 sec，吸棄上清，留下細胞團。
③ 加入 200 μl 1× PBS 重懸洗滌細胞，13, 000 rpm 離心 10 sec，wan全吸棄上清。
④ 再次加入 180 μl 1× PBS，振蕩混勻，使細胞che底懸浮。
將 20 ~ 50 mg（脾組織用量應少 10 mg）新鮮或者解凍的組織用解剖dao切成小碎塊（切成小塊可以提高產量）或者在液氮中研磨組織成細粉后，轉入裝有 180 μl 組織裂解液 TL 的 1.5 ml 離心管中，用大口徑槍頭吹打混勻。
將 0.2 ~ 0.5 cm 的鼠尾巴尖(即 20 ~ 50 mg)剪碎（一定要剪 0 ~ 2cm范圍內的尾巴尖，否則裂解效果不好），或者在液氮中研磨成細粉后，轉入裝有 180 μl 裂解液 TL 的 1.5 ml 離心管中，用大口徑槍頭吹打混勻。
① 取 0.5 ~ 2 ml 培養菌液（最多不超過 2×109 個細胞），10, 000 rpm，
離心 30 sec，盡可能的吸棄上清，收集菌體。
起始處理量可以根據細菌密度、細胞種類、預期產量進行調整，但是離心吸附柱最大吸附能力是 30 μg 基因組 DNA，如果菌體過量超過最大吸附能力，反而會嚴重降低產量。
② 加入 200 μl 1× PBS 重懸，10, 000 rpm 離心 30 sec，吸棄上清。
將細胞振蕩或者吹打充分重懸于 180 μl 1× PBS 中。
注意：對于較難破壁的革蘭氏陽性菌，可略過 b 步驟，加入溶菌mei進行破壁處理，具體方法為：加入 180 μl 緩沖液(20 mM Tris, pH 8.0； 2 mM Na2-EDTA；1.2% Triton X~100；臨用前加入終濃度為 20 mg/ ml 的溶菌mei(溶菌mei必須用溶菌mei干粉溶解在緩沖液中進行配制，否則會導致溶菌mei無活性))，37℃處理 30 min 以上。
a. 提取血液基因組時，只需加入 Proteinase K 混勻，即可進行下一步。
b. 提取細胞基因組時，只需加入 Proteinase K 混勻，即可進行下一步。
c. 提取動物組織、植物組織的基因組時，加入 Proteinase K 混勻后，在 56℃放置 1~3 小時，每小時顛倒混合樣品 2~3 次，直至組織wan全消化溶解，再進行下一步。
d. 提取鼠尾基因組時，加入 Proteinase K 混勻后，在 56℃放置 3 小時
（也可以過夜消化），每小時顛倒混合樣品 2~3 次，直至組織wan全消化溶解，再進行下一步。
e. 提取細菌基因組時，只需加入 Proteinase K 混勻，即可進行下一步。
4. （可選步驟）加入 5 μl RNase A (100mg/ml) 溶液，振蕩混勻，室溫放置 5 ~ 10min。
5. 加入200 μl 結合液CB，充分振蕩混勻，70℃水浴或金屬浴處理10 min。
6. 冷卻后加 100 μl 無水乙chun (或異丙chun)，充分振蕩混勻，此時可能會出現絮狀沉淀，短暫離心以去除管蓋內壁水珠。
7. 將所得溶液和絮狀沉淀加入一個DNA 吸附柱中，（吸附柱放入收集管中）
13, 000 rpm 離心 1 min，DNA 被吸附在膜上，倒棄濾液。
8. 加入 500 μl 抑制物去除液 IR，13, 000 rpm 離心 30 sec，倒棄濾液。
9. 加入 600 μl 漂洗液 WB（請檢查是否已加入無水乙chun），13, 000 rpm
離心 30 sec，倒棄濾液。
10. 重復步驟 9 一遍。
11. 將 DNA 吸附柱放回空收集管中，13, 000 rpm 離心 2 min，盡量除去漂洗液， 以免漂洗液中殘留乙chun抑制下游反應。
12. 取出 DNA 吸附柱，放入一個干凈的 1.5 ml 離心管中，向吸附膜的中央加入 100 μl 洗脫緩沖液 EB （洗脫緩沖液事先在 80 ~ 100℃水浴中預熱可以提高產量）， 室溫放置 3 ~ 5 min，13, 000 rpm 離心 1 min。
可將第一次洗脫所得溶液重新加入離心柱中，室溫放置 2 min，13, 000 rpm 離心 1 min。可以提高濃度 10%左右。
13. DNA 可以存放在~ 20℃，如果要長時間存放，可以放置在~70℃。
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