游離膽gu醇（free cholesterol, FC）含量測定試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

FC 是構(gòu)成細胞mo的主要成分，也是合成腎shang腺皮質(zhì)激素、性激su、膽zhi酸及維sheng素 D 等生理huo性物質(zhì)的重要原料。FC 濃度可作為脂代謝的指標。

測定原理：

FC 氧化酶催化 FC 生成△4-膽甾烯酮和H2O2，過氧化物酶催化H2O2、4-氨基安替bi林和酚生成紅色醌類化合物，在 500nm 有吸收峰，其顏色深淺與FC 含量成正比。

游離膽gu醇含量測定試劑盒   脂肪酸系列

組成：

標準品：液體 1ml×1 支，濃度為 0.5 μ mol/ml，4℃保存

自備儀器和用品：

可見分光光度計、水浴鍋、可調(diào)式移液槍、1ml 玻璃比色皿、異丙醇和蒸餾水。

具體產(chǎn)品的參數(shù)以收到產(chǎn)品說明書的參數(shù)為準

FC 的提取：

1、組織：按照組織質(zhì)量（g）：試劑一體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 試劑一）進行冰浴勻漿。8000g，4℃離心 10min，取上清置冰上待測。

2. 細菌、真菌：先收集 400-500 萬細胞或細菌到離心管內(nèi)，棄上清，加 1ml 試劑一，超聲波破碎 1min（強度 20％，超聲 2s，停 1s），即FC 待測液。

3. 血清（漿）樣品：直接測定。

測定操作：

1. 分光光度計預熱 30 min，調(diào)節(jié)波長到 500 nm，蒸餾水調(diào)零。

2. FC 工作液的配制：臨用前，吸取約 0.8ml 試劑二分別加入試劑三和試劑四瓶中，充分溶解后再全部轉(zhuǎn)移回試劑二瓶中，充分混勻，FC 工作液置于 37℃水浴 10min。用不完的工作液 4℃保存一周。

3. 標準管：依次在 1ml 玻璃比色皿中加入 100μl FC 標準液和 900μl FC 工作液，混勻，37℃靜置 3h 后于500nm 測定A 標準管。

4. 測定管：依次在 1ml 玻璃比色皿中加入 100μl FC 待測液和 900μl FC 工作液，混勻，37℃靜置 3h 后于500nm 測定A 測定管。

5、空白管：依次在 1ml 玻璃比色皿中加入 100μl 試劑一和 900μl FC 工作液，混勻，37℃靜置 3h 后于 500nm測定A 測定管。

注意：

1、標準管和空白管只需測定一次。

2、若測定管產(chǎn)生白色渾濁，可以將待測液用異丙醇稀釋 2~5 倍后測定，并在最后結(jié)果乘以相應倍數(shù)。計算公式：

1. 血清（漿）中FC 含量計算：

FC 含量（μmol /dL）= C 標準液×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）×100ml

=50×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）

C 標準液：0.5μmol/ml；100 ml：1dL=100 ml。

2. 組織中FC 含量計算：

(1) 按樣本蛋白濃度計算

FC 含量（μmol / mg prot）= C 標準液×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷Cpr

= 0.5×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷Cpr

(2) 按樣本鮮重計算

FC 含量（μmol / g 鮮重）= C 標準液×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷W

= 0.5×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷W C 標準液：0.5μmol/ml；Cpr：樣本蛋白濃度，mg/ml；W：樣本質(zhì)量，g/ml

3. 細胞、細菌中FC 含量計算：

FC 含量（μmol /10⁴ cell）= C 標準液×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷細菌或細胞（10⁴ cell

/L）

=0.5×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷細菌或細胞（10⁴ cell /L） C 標準液：0.5μmol/ml。

zui低檢出限為 1nmol/ml。

游離膽gu醇含量測定試劑盒   脂肪酸系列